70. Kalan klor tespiti için önlemler nelerdir?
Klor, sulu çözeltide, özellikle düşük konsantrasyonlarda çok kararsızdır ve içerik hızla azalacaktır. Güneş ışığına ve diğer güçlü ışığa veya tedirgin edildiğinde klorun azalma oranı hızlandırılacaktır. Bu nedenle, numune örneklemeden sonra saklanamaz ve klor belirleme derhal başlatılmalı ve su numunesinin hafif maruziyetinden ve ajitasyondan kaçınmalıdır.
Belirleme işlemi sırasında tüm işlemler doğrudan güneş ışığına maruz kalmayı önlemeli ve mümkün olan en düşük sıcaklık ve yumuşak ışıkta gerçekleştirilmesi en iyisidir. Ek olarak, tüm kolorimetrik yöntemler, ham suyun rengini ve kromatikliğini telafi etmek için renk ve bulanıklık boşlukları gerektirir, özellikle bulanıklık ve kromatiklik yüksek olduğunda, boş değer belirlenmelidir.
Kalıntı kloru belirlemek için O-tolidin görsel kolorimetrik yöntem kullanılırken, su örneği standart O-tolidin çözeltisi ile eşit olarak karıştırılırsa ve daha sonra kolorimetrik yöntem hemen gerçekleştirilirse, ölçülen sonuç serbest artık klordur. Su numunesi, kolorimetrik yöntem gerçekleştirilmeden önce en yüksek kromatikliği üretmek için 10 dakika karanlık bir yere yerleştirilirse, sonuç toplam kalıntı klordur. Toplam artık klor eksi serbest artık klor kombine kalıntı klordur.
O-tolidin görsel kolorimetrik yöntem kullanılırken, artık klorun büyük olup olmadığını belirlemek için, turuncu sarı bir renk üretilecektir; Su numunesi alkalinitesi çok yüksekse ve artık klor küçükse, açık yeşil veya açık mavi renk üretilecektir. Şu anda, normal açık sarı renk üretmek için 1 mL O-tolidin standart çözeltisi eklenebilir.
71. Biyofilm yönteminin biyolojik fazı ile aktif çamur arasındaki farklar nelerdir?
Biyofilm arıtma sisteminin biyolojik faz özellikleri, özellikle mikrobiyal türler ve dağılım açısından aktif çamur işleminden farklıdır.
Genel olarak konuşursak, su kalitesindeki kademeli değişim ve mikrobiyal büyüme için çevresel koşulların iyileşmesi nedeniyle, biyofilm sistemindeki mikroorganizmaların tipleri ve miktarları, aktif çamur sürecindekilerden daha fazladır ve gıda zinciri, özellikle filament fungi, protozoa ve metazoans sayısındaki artış, özellikle de anaerikler ve aynı zamanda faktörlü bir bükülme ve aynı zamanda bazı bükülme patikası vardır. Algler güneş ışığına maruz kalan alanlarda görünebilir ve filtre sinekleri gibi böcekler de ortaya çıkabilir. Dağıtım özellikleri, biyofilmin kalınlığı (yüzeyden içe) veya etkinin yönü (etkiyle farklı temas süresi), mikroorganizmaların türleri ve miktarları büyük farklılıklar göstermesidir. Çok aşamalı tedavinin ilk aşamasında veya aşağı akış dolgu tabakasının üst kısmında, biyofilm genellikle flokülten bakteriler hakimdir ve film kalınlığı da nispeten büyüktür (2-3mm); Aşamaların sayısının artması veya aşağı akış dolgu katmanının alt kısmının artmasıyla, temas ettiği su kalitesi kısmen tedavi edildiğinden, daha filamentli bakteriler, protozoa ve metazoa biyofilmde yavaş yavaş ortaya çıkacaktır; Mikroorganizma türleri artmaktadır, ancak biyofilmin kalınlığı sürekli azalmaktadır (1-2 mm). Biyofilmin yüzeyindeki mikroorganizmalar hepsi aerobiktir ve kalınlık arttıkça mikroorganizmalar yavaş yavaş fakültatif veya hatta anaerobik hale gelir.
Biyofilm, filtre malzemesi veya dolgu üzerinde sabitlenir ve biyolojik katı tutma süresi SRT (çamur yaşı) uzundur, böylece uzun bir nesil süresi ve nitrifikasyon bakterileri gibi çok düşük bir proliferasyon oranı ile mikroorganizmalar yetiştirebilir. Biyofilm üzerinde çok sayıda filamentli bakteri de ortaya çıkabilir, ancak çamur hacimliği gerçekleşmez. Aktif çamur yöntemi ile karşılaştırıldığında, biyofilm üzerindeki organizmalarda hayvan beslenmesinin oranı daha büyüktür, mikro analizlerin sağkalım oranı da daha yüksektir ve yüksek besin seviyesi organizmalarda yaşayabilir. Oligochaetes ve böcekler yırtıcı siliatlar, rotiferler ve nematodların üstünde yaşarlar. Bu nedenle, biyofilm üzerindeki gıda zinciri, aktif çamurdaki gıda zincirinden daha uzundur, bu nedenle biyofilm yöntemi tarafından üretilen çamur miktarı aktive edilmiş çamur yönteminden daha azdır.
Her bir seviyedeki veya her bir dolgu katmanındaki karakteristik mikroorganizmalar, farklı atık su kalitesi nedeniyle farklı olacaktır, yani su kalitesindeki değişiklikler biyofilmdeki mikroorganizmaların tiplerinde ve sayısında değişikliklere neden olacaktır. Etkili konsantrasyon arttığında, orijinal seviyenin karakteristik mikroorganizmalarının aşağı doğru hareket ettiği, yani dolgu maddesinin ön seviyesindeki veya üst katmandaki mikroorganizmaların arka seviyede veya alt dolgu katmanında görünebileceği gözlenebilir. Bu nedenle, atık su konsantrasyonu veya çamur yükündeki değişiklikleri çıkarmak için biyolojik faz gözlemiyle benzer değişiklikler gözlenebilir.
72. Sudaki toplam bakteriyel sayı göstergesinin anlamı nedir?
Toplam bakteriyel sayı, 24 saat boyunca 37oC'de kültürlendikten sonra besin agar ortamında 1 ml su örneğinde yetiştirilen kolonilerin sayısını ifade eder. Ölçüm birimi genellikle her ml suda bulunan toplam bakteri sayısıdır. Sudaki toplam bakteri sayısı genellikle su kütlesindeki organik kirlilik derecesi ile ilişkilidir ve su kirliliği derecesini ve insan vücuduna olası zararları değerlendirmek için önemli göstergelerden biridir.
Toplam bakteri sayısının analiz yöntemi, su örneğindeki bakterileri saymak için standart plaka yöntemini kullanır, bu da sudaki aerobik ve fakültatif anaerobik heterotrofik bakterilerin yoğunluğunu belirlemek için bir yöntemdir. Bununla birlikte, hiçbir besin tabanı veya herhangi bir çevresel durum bir su örneğindeki tüm bakterilerin fizyolojik gereksinimlerini karşılayamadığından ve sudaki bakteriler bireysel bireyler, çiftler, zincirler, kümeler veya kümeler şeklinde mevcut olabilir, ölçülen koloni sayısı aslında test edilen su örneğinde hayatta kalan bakteri sayısından daha düşüktür.
73. Toplam bakteri sayısını belirleme önlemleri nelerdir?
1ml su numunesi veya 2 ila 3 seyreltilmiş su numunelerini uygun seyreltme katları ile emmek için aseptik çalışma yöntemini kullanın, sterilize plakaya enjekte edin, daha sonra 15ml besin agar ortamını dökün ve su örneği ile iyice karıştırın, her su örneği için iki paralel numune yapın ve ek olarak, her testte dökülen sadece besin agar ortamı ile boş bir kontrol yapılır.
Kültürden sonra, plaka kolonisi sayısı derhal yapılmalıdır. Sayı ertelenmesi gerekiyorsa, plaka 5-10oC'lik bir ortamda saklanabilir, ancak 24 saatten fazla bir süredir saklanabilir ve bu uygulama rutin bir çalışma yöntemi olarak kullanılmamalıdır.
Plaka kolonilerini sayarken, çıplak gözle gözlemleyebilirsiniz. İhlalleri önlemek için, gerekirse kontrol etmek için bir büyüteç kullanın. Benzer görünen ve birbirine yakın ancak dokunmayan koloniler için, mesafe en küçük koloninin çapından daha az olduğu sürece, ayrı ayrı sayılmalıdır. Yakın temas halinde olan ancak farklı görünümlere (morfoloji veya renk) sahip olan koloniler de ayrı olarak sayılmalıdır.
Aynı seyreltmenin ortalama koloni sayısını hesaplarken, plakalardan birinin büyük pul kolonileri büyümesi varsa, kullanılmamalı ve pul kolonileri olmayan plaka seyreltmenin koloni sayısı olarak kullanılmalıdır. Flake kolonileri plakanın yarısından azsa ve kalan kolonilerin dağılımı çok düzgünse, düzgün büyümeye sahip plakanın 1/2 koloni sayısı, tüm plakanın koloni sayısını temsil etmek için 2 ile çarpılabilir.
Toplam bakteriyel sayısının sonucu, her bir plakadaki toplam koloni sayısı veya aynı seyreltmenin paralel deney plakalarındaki ortalama koloni sayısı, seyreltme katı ile çarpılır. Nihai sonuç 100 içinde olduğunda, sonuç gerçek koloni sayısına göre kaydedilir; 100'den fazla olduğunda, iki önemli rakam 10'luk bir üs olarak kullanılır ve ifade edilir. Koloni sayısı sayılamazsa, sonucu bildirirken seyreltme katına dikkat edilmelidir.
74. Koloni sayısına göre bir su örneğindeki toplam bakteri sayısı nasıl hesaplanır?
Toplam bakteri sayısının test sonuçlarını hesaplarken, farklı seyreltilerdeki ortalama koloni sayısına göre karşılaştırmak ve hesaplamak gerekir. Yöntem aşağıdaki gibidir:
⑴ İlk olarak, hesaplama için ortalama koloni sayısının 30 ila 300 arasında olduğu durumu seçin. Sadece bir seyreltmedeki ortalama koloni sayısı bu aralığı karşıladığında, su örneğindeki toplam bakteri sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile çoğalan ortalama koloni sayısı kullanılır.
⑵ İki seyreltideki ortalama koloni sayısı 30 ila 300 arasındaysa, hesaplama yöntemi ikisinin oranına göre belirlenmelidir. Oran 2'den azsa, su numunesinin toplam bakteriyel sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile çarpılan ortalama koloni sayısının ortalaması kullanılmalıdır; Oran 2'den büyükse, su numunesinin toplam bakteriyel sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile çarpılan ortalama koloni sayısının daha küçük olması kullanılmalıdır.
⑶ Tüm seyreltilerin ortalama koloni sayısı 300'den büyükse, su numunesinin toplam bakteriyel sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile çarpılan en büyük seyreltme katının ortalama koloni sayısı kullanılmalıdır.
⑷ Tüm seyreltilerin ortalama koloni sayısı 30'dan azsa, su numunesinin toplam bakteriyel sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile çarpılan en küçük seyreltmenin ortalama koloni sayısı kullanılmalıdır.
⑸ Tüm seyreltilerin ortalama koloni sayısı 30 ila 300 arasında olmasa da, su numunesinin toplam bakteriyel sayısının sonucu olarak seyreltme katı ile en yakın ortalama koloni sayısı kullanılmalıdır.
75. Koliform sayısının (değer) anlamı nedir?
Koliform bakteriler, aerobik veya fakültatif anaerobik, laktoz fermantasyon, gram negatif, sporsuz çubuklar sınıfını ifade eder, bu nedenle bazen fekal koliformlar veya Escherichia coli olarak da adlandırılır. Koliform bakteriler, 24 saat boyunca 37oC'de laktoz ortamında kültürlendikten sonra asit ve gaz üretebilir. Koliform bakterilerin sayısı (değeri) genellikle 1L veya 100mL suda bulunan koliform bakteri sayısında ölçülür.
Su kaynağı dışkı ile kirlenirse, bağırsak patojenleri tarafından kirlenebilir ve bağırsak bulaşıcı hastalıklara neden olabilir. Bağırsak patojenleri mikroorganizma sayısının nispeten küçük bir kısmını açıkladığından, patojenleri sudan, özellikle musluk suyundan ayırmak genellikle çok zordur. Koliform bakteriler bağırsak aerobik bakteriler arasında en yaygın ve en büyük bakteri türüdür, bu nedenle genellikle fekal kontaminasyon için gösterge bakterileri olarak kullanılırlar. Yani, sudaki koliform bakterilerin sayısı, su kaynağının dışkı ile kirlenip kontamine olup olmadığını ve su kaynağının bağırsak patojenleri tarafından kontamine olduğunu çıkarma olasılığını yargılamak için kullanılır.
76. Koliform bakterilerin sayısını belirleme yöntemleri nelerdir?
Toplam koliform bakterilerin belirlenmesi için yaygın olarak kullanılan iki yöntem vardır: çok tüp fermantasyon yöntemi ve membran filtre yöntemi.
Çok tüplü fermantasyon yöntemi, laktoz fermantasyonu, gram negatif boyama, spor ve çubuk şeklindeki koliform bakterilerin özelliklerine dayanmaktadır. Su örneğindeki toplam koliform bakteri sayısını belirlemek için üç adımla test edilir. Çok tüplü fermantasyon yöntemi, MPN olarak da bilinen deneysel sonuçları ifade etmek için en olası sayıyı kullanır. Aslında, istatistiksel teoriye dayanan su kütlelerinde E. coli'nin yoğunluğunu ve sıhhi kalitesini tahmin etmek için bir yöntemdir. Bu tahmin gerçek sayıdan daha büyük olma eğilimindedir. Koliform sayısının tahmini değeri, hem pozitif hem de negatif sonuçlar gösteren seyreltme ile belirlenir. Su örneği testi için gereken tekrarların sayısını tasarlarken, gerekli verilerin doğruluğuna dayanmalıdır.
Membran filtre yöntemi, su numunesini filtrelemek için özel bir sterilize mikro gözenekli membran kullanır. Bakteriler membran üzerinde sıkıştıktan sonra, membran kültür için fuchsin sodyum sülfit kültür ortamına bağlanır. Koliform bakteriler laktozu fermente edebildiğinden, metalik parlaklıklı mor-kırmızı koloniler filtre membranında yetiştirildikten sonra ortaya çıkacaktır. Filtre membranındaki bu karakteristik koloni sayısını sayarak, her litre su örneğinde bulunan koliform bakterilerin sayısı hesaplanabilir. Filtre membran yöntemi, daha büyük bir hacimde su numunesi ölçebilir ve sonuçları çok tüplü fermantasyon yönteminden daha hızlı elde edebilir, ancak bulanıklık yüksek olduğunda ve E'nin yoğunluğu olduğunda etki zayıftır. coli bakterileri yüksektir.
77. Kalan klor nedir?
Kalan klor, su belirli bir süre klor ile dezenfekte edildikten sonra suda kalan klordur. İşlevi sürekli bakterisidal yeteneği korumaktır. Su boru ağına girdiği andan su noktasına kadar, olası patojen hasarını ve yeniden büyümeyi önlemek için sudaki dezenfektanın etkisi korunmalıdır. Bu, suya eklenen dezenfektan miktarının sadece sudaki patojenleri öldürme ihtiyaçlarını karşılamakla kalmayıp, aynı zamanda su taşımacılığı işlemi sırasında patojenlerin yeniden büyümesini önlemek için belirli bir miktarda artık miktar tutmasını gerektirir. Klor dezenfeksiyonu kullanılırsa, dezenfektanın o zamanlar dezenfeksiyon ihtiyaçlarını aşan kısmı artık klordur.
Kalan klorun iki formu vardır: serbest artık klor (CL2, HOCL ve OCL-) ve kombine artık klor (NH2CL, NHCL2 ve NCL3). Bu iki form aynı su numunesinde aynı anda bulunabilir ve ikisinin toplamına toplam kozal klor denir. Serbest artık klor güçlü bakterisidal yeteneğe sahiptir, ancak ayrışması kolaydır. Kombine artık klor zayıf bakterisidal yeteneğe sahiptir, ancak suda daha uzun sürer. Genel olarak, suda amonyak veya amonyum olmadığında, artık klor serbest kalıntı klordur, suda amonyak veya amonyum olduğunda, artık klor genellikle sadece kombine koza ve bazen artık klor ve kombine kalıntı klor birleşimi içerir. Kalan klor miktarı uygun olmalıdır. Çok düşük patojenlerin önlenmesinde ve tedavisinde rol oynamaz. Çok yüksek, sadece dezenfeksiyon maliyetini arttırmakla kalmaz, aynı zamanda insan vücuduyla temas halindeyken insan vücuduna zarar verebilir.
Kavramsal olarak, artık klor klor gazı ve klor serisi dezenfektanları ifade eder. Klor dioksit gibi diğer klor dışı dezenfektanlar kullanılırken, artık klor belirli bir temas döneminden sonra suda kalan dezenfektan olarak anlaşılmalıdır.
78. Kalan klorun belirlenmesi için yöntemler nelerdir? Uygulanabilir kapsamları nelerdir?
Kalan klorun belirlenmesi iyot titrasyonu, O-tolidin görsel kolorimetrisi, N-dietil-p-fenilendiamin (N, GB 11897-89), N-dietil-p-fenileneneniyamin spektrofotometri (GB 11898-89), titrasyon (GB 11898-89), the the the the the the the the the the the the the the Mettration ile gerçekleştirilebilir. su numunesindeki artık klor; O-tolidin görsel kolorimetri yöntemi, çalışma prosedürünü değiştirerek sırasıyla toplam artık klor ve serbest artık kloru belirleyebilir; N, N-dietil-P-fenilendiamin titrasyon yöntemi veya spektrofotometri yöntemi, 0.03-5 mg/L konsantrasyon aralığında serbest klor veya toplam kloru belirleyebilir ve çalışma prosedürünü değiştirerek, monokloramin, dikloramin ve bazı kombine klor bileşenleri de belirlenebilir.
İyot titrasyon yöntemi, toplam kalıntı klor içeriğine 1 mg/L'den büyük olan su numuneleri için uygundur ve eklenen klor miktarını belirlemek için yaygın olarak kullanılan bir yöntemdir. O-tolidin görsel kolorimetrik yönteminin çalıştırılması basittir ve içme suyunda artık klorun belirlenmesi için yaygın bir yöntemdir. Ölçüm aralığı 0.01-10 mg/L'dir. N, N-dietil-P-fenilendiamin titrasyon yöntemi veya spektrofotometri yöntemi yüksek hassasiyete sahiptir ve düşük artık klor içeriğine sahip su numunelerini belirleyebilir. Organik madde içeren kanalizasyonda mevcut toplam klorun belirlenmesi için uygundur. İki yöntemin ölçüm aralıkları sırasıyla 0.05-1.5 mg/L ve 0.03-5 mg/L'dir.